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Sample Preparation · 组织

Western Blot 组织样本制备:采集、匀浆与目标蛋白回收

组织样本还受到细胞外基质、脂质、结缔组织和细胞组成异质性的影响。评价组织制备时,除了观察匀浆是否充分,还应确认目标蛋白能否稳定回收,以及待测修饰状态是否得到保存。

本页解决的问题

清澈的组织上清也可能丢失目标蛋白

过度澄清可能同时丢弃膜性或不溶目标;破碎不足则会留下组织块并造成回收率波动。组织制备应根据目标回收率和后续泳道质量判断,而不能只看上清是否清澈。

开始前需要确定的 4 项条件

取材前先确定采集、稳定和机械破碎方式。

采集与稳定

记录取材到冷冻/裂解的时间,并让不同实验组的处理历史一致。

组织物理性质

软组织、纤维组织、脂质丰富组织和极少量样本需要不同的破碎与冷却策略。

目标所在组分

明确目标应位于全组织提取物,还是某个容易在澄清时损失的组分。

匀浆设备尺度

让探头、珠子、管体和样本/缓冲体积匹配具体设备,不照搬另一台设备的固定循环次数。

不同组织类型需重点调整的条件

以下条件需要根据具体组织和设备验证。

纤维组织

机械破碎不足可能比延长去污剂孵育更限制回收,应优先解决样本尺寸和设备匹配。

脂质丰富组织

浮脂层和相污染会影响回收与蛋白定量;应明确保留哪一层,并在所有样本中采用一致规则。

极小样本

死体积和吸附损失比例更高,不宜仅为方便匀浆而使用过量裂解液。

磷酸化目标

采集速度、低温和磷酸酶抑制剂的加入时间可能比最终总蛋白产量更重要。

组织样本制备流程

1. 稳定并记录组织

怎么做

按验证过的新鲜/冷冻流程快速处理,并保证实验组间一致。

当场检查

记录组织身份、质量/尺寸、取材时间和保存历史。

何时停下来处理

不同组的温热暴露或反复解冻明显不一致时,应先解决前处理偏差。

2. 把组织处理到适合匀浆的尺度

怎么做

使用低温工具,将样本尺寸调整到所用匀浆设备可重复处理的范围。

当场检查

各样本进入匀浆步骤时尺寸和输入方式应一致。

何时停下来处理

设备过载或大块组织无法稳定处理时,不应继续。

3. 在冷却条件下匀浆

怎么做

采用设备厂商或实验室验证过的程序,并加入足够且兼容的裂解液。

当场检查

检查残留组织、升温、起泡和工具表面的样本损失。

何时停下来处理

明显升温或验证循环后仍有完整组织时,应先解决匀浆问题。

4. 仅在需要时继续裂解或剪切

怎么做

按验证方法追加机械处理或超声。

当场检查

观察黏度和回收率,而不是单纯增加机械能量。

何时停下来处理

起泡或升温继续增加而回收不再改善时,应停止追加处理。

5. 澄清并保留可用于判断的组分

怎么做

使用验证过的澄清步骤;首次优化时保留不溶性材料,直到确认目标回收情况。

当场检查

记录沉淀、脂质层,必要时比较不同组分。

何时停下来处理

目标富集在通常被丢弃的组分时,应先修改提取方法。

6. 定量并统一上样条件

怎么做

使用与实际组织裂解基质兼容的蛋白定量法,并让各泳道化学组成尽量一致。

当场检查

检查标准曲线、样本稀释和重复一致性。

何时停下来处理

出现非线性或明显基质干扰时,不应继续使用该浓度值。

组织制备应保留的信息

组织身份、质量/尺寸和处理
取材到稳定的时间
匀浆设备与实际程序
裂解液和抑制剂
澄清条件及保留/丢弃组分
蛋白定量方法与稀释记录

根据组织制备结果排查

目标信号偏弱时,先检查组织破碎和目标回收情况。

观察

仍有明显大块组织残留

解释

机械破碎不完整。

下一步

先修正样本尺寸、工具或程序匹配。

先不要做

单纯增加起始组织量不会解决破碎不足。

观察

目标主要在沉淀中

解释

当前提取/澄清方法没有回收目标组分。

下一步

比较其他有依据的提取或分级策略。

先不要做

丢弃沉淀后不能再把目标弱简单归因于抗体。

观察

相似组织输入的蛋白产量波动很大

解释

匀浆、缓冲比例、脂质处理或定量干扰可能不一致。

下一步

先核对这些变量,再根据浓度进行上样归一化。

先不要做

浓度归一化不能纠正有偏的提取过程。

观察

磷酸化信号随处理延迟明显变化

解释

取材后的处理过程可能正在改变待测修饰状态。

下一步

标准化采集、稳定和抑制剂加入时序。

先不要做

此时不宜先增加总蛋白上样量。

相关实验指南

本页主要依据

CST 的组织提取流程是一套厂商验证实例,其中具体组织尺寸、匀浆次数和超声条件不适用于所有组织和设备。

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